EFEITO DO DIFENOCONAZOL SOBRE POPULAÇÕES DE Trichoderma spp.: UM ESTUDO COMPARATIVO
DOI:
https://doi.org/10.33837/msj.v9i1.1769Palavras-chave:
EC50, sensibilidade, bioinsumo, isoladosResumo
Fungos do gênero Trichoderma spp. são amplamente distribuídos, conhecidos por atuar como agentes de biocontrole, absorção de nutrientes, promoção de crescimento vegetal, decomposição da matéria orgânica, resistência ao estresse hídrico e salino e resistência sistêmica induzida (ISR) nas plantas. O objetivo deste trabalho foi determinar a dosagem letal e sensibilidade de isolados de Trichoderma spp. oriundos de diferentes hospedeiros ao difenoconazol. Utilizou-se 16 isolados de Trichoderma spp., que foram coletados de campos produtores de soja localizadas no Estado de Goiás, Paraná e Brasília. Estes isolados estão preservados no laboratório de Fitopatologia do IFGoiano - Campus Urutaí. Utilizou-se meio de batata-dextrose-ágar (BDA) para obtenção de culturas monospóricas. Foram utilizando concentrações de (0, 0.1, 1, 10 e 100 µL mL-1), com um delineamento experimental inteiramente casualizado (DIC), com três repetições por tratamento, totalizando 240 unidades experimentais. Avaliou-se o diâmetro da colônia do 1 ao 7 dia após a inoculação (DAI), avaliou-se a área abaixo da curva de progresso do crescimento micelial (AACPCM), taxa de crescimento micelial (TCM), eficácia de controle a 50% de crescimento micelial (EC50) e a % de inibição do crescimento. A EC50 variou entre os isolados de 0,26 ± 1,18 (IF 299) a 4,40 ± 7,63 µL mL-1(IF 310) (EC50 ± erro padrão). Com base nessa amplitude, pode-se dizer que os isolados são sensíveis ao difenoconazol, comparando com outras populações que alcançam EC50 em patamares de 80-200 µL mL-1 (ppm). Por outro lado, uma proporção minoritária dos isolados (6,25%) mostrou-se insensível. O isolado IF 316 apresentou menor AACPCM e consequente maior sensibilidade as diluições de difecononazol.
Referências
Brent, K. J.; Hollomon, D. W. (2007). Fungicide resistance in crop pathogens: How can it be managed? (2nd ed.). Brussels, Belgium: Fungicide Resistance Action Committee.
Budha, C. B., Shrestha, S. M., Manandhar, H. K.; Baidya, S. (2022). In vitro compatibility of some native isolates of Trichoderma spp. with commonly used pesticides. Journal of the Plant Protection Society, 7(1), 114–122. DOI: https://doi.org/10.3126/jpps.v7i01.47295
Edgington, L. V., Khew, K. L.; Barron, G. L. (1971). Fungitoxic spectrum of benzimidazole compounds. Phytopathology, 61, 42–44.
Guzman-Guzman, P., Kumar, A., dos Santos-Villalobos, S., Vine-Cote, F. I., Orozco-Mosqueda, M.C., Fadiji, A. E., Hyder, S. O. O.; Santoyo, G. (2023). Trichoderma species: Our best fungal allies in the biocontrol of plant diseases—A review. Plants, 12(3), 432. DOI: https://doi.org/10.3390/plants12030432
Harman, G. E., Howell, C. R., Viterbo, A., Chet, I.; Lorito, M. (2004). Trichoderma species—Opportunistic, avirulent plant symbionts. Nature Reviews Microbiology, 2(1), 43–56. DOI: https://doi.org/10.1038/nrmicro797
Khadiri, M., Boubaker, H., Farhaoui, A., Ezrari, S., Radi, M., Ezzouggari, R., Mokrini, F., Barka, E., Lahlali, R. (2024). In vitro assessment of Penicillium expansum sensitivity to difenoconazole. Microorganisms, 12, Article 1. DOI: https://doi.org/10.3390/microorganisms12010001
Kong, Z. Li, X., Zhang, H., Wang, Y., & Chen, Y. (2023). Detection and characterization of difenoconazole resistance in Stagonosporopsis citrulli from watermelon and muskmelon in Zhejiang Province of China. Phytopathology Research, 5(1), 1. DOI: https://doi.org/10.1186/s42483-022-00156-8
Kredics, L., Büchner, R., Balázs, D., Hatvani, L., Manczinger, L., Varga, M., Nagy, Z. Á., Szekeres, A., & Druzhinina, I. S. (2024). Recent advances in the use of Trichoderma-containing multicomponent microbial inoculants for pathogen control and plant growth promotion. World Journal of Microbiology and Biotechnology, 40, 162. DOI: https://doi.org/10.1007/s11274-024-03965-5
Kubiak, A., Wolna-Maruwka, A., Pilarska, A. A., Niewiadomska, A., & Piotrowska-Cyplik, A. (2023). Fungi of the Trichoderma genus: Future perspectives of benefits in sustainable agriculture. Applied Sciences, 13, 6434. DOI: https://doi.org/10.3390/app13116434
Limdolthamand, S., Songkumarn, P., Suwannarat, S., Jantasorn, A., & Dethoup, T. (2023). Biocontrol efficacy of endophytic Trichoderma spp. in fresh and dry powder formulations in controlling northern corn leaf blight in sweet corn. Biological Control, 181, Article 105093. DOI: https://doi.org/10.1016/j.biocontrol.2023.105093
Mahajan, M. S., Deokar, B. D., & Munde, N. N. (2024). In vitro evaluation of compatibility of Trichoderma asperellum with systemic and non-systemic fungicides. International Journal of Plant Pathology & Microbiology, 4(2), 127–130.
Manandhar, S., Timila, R., Karkee, A., Gupt, S., & Baidya, S. (2020). Compatibility study of Trichoderma isolates with chemical fungicides. Journal of Agriculture and Environment, 21, 9–18. DOI: https://doi.org/10.3126/aej.v21i0.38438
Martinez, Y., Ribera, J., Schwarze, F. W. M. R., & De France, K. (2023). Biotechnological development of formulations based on Trichoderma for biological control. Applied Microbiology and Biotechnology, 107, 5595–5612. DOI: https://doi.org/10.1007/s00253-023-12687-x
Massi, F., Torriani, S. F. F., Borghi, L., & Toffolatti, S. L. (2021). Fungicide resistance evolution and detection in plant pathogens: Plasmopara viticola as a case study. Microorganisms, 9(1), 119. DOI: https://doi.org/10.3390/microorganisms9010119
Mukherjee, P. K., Horwitz, B. A., & Kenerley, C. M. (2012). Secondary metabolism in Trichoderma—A genomic perspective. Microbiology, 158, 35–45. DOI: https://doi.org/10.1099/mic.0.053629-0
Rajesh, K., Ramya, V., Ameer, S., Basha, S. N. C. V., Pushpavalli, L., & Aravind, K. (2023). In vitro compatibility of Trichoderma and Bacillus biocontrol agents with different fungicides. International Journal of Environment and Climate Change, 13(9), 3340–3353. DOI: https://doi.org/10.9734/ijecc/2023/v13i92587
Shaner, G., & Finney, R. (1977). The effect of nitrogen fertilization on the expression of slow-mildewing resistance in Knox wheat. Phytopathology, 67, 1051–1056.
Wang, C., Xu, L., Liang, X., Wang, J., Xian, X., Zhang, Y., & Yang, Y. (2021). Molecular characterization and overexpression of the difenoconazole resistance gene CYP51 in Lasiodiplodia theobromae field isolates. Scientific Reports, 11, 1–10. DOI: https://doi.org/10.1038/s41598-021-01774-8
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